前言
慢性肺源性心臟病(chronic pulmonary heart disease, CPHD)是由慢性支氣管炎、肺氣腫、其他胸部疾病及肺血管病變引起的心臟病,主要病理改變?yōu)榉窝h(huán)高壓、右心室增大、右心功能不全。大約85%的CPHD是由慢性阻塞性肺疾病(chronic obstructive pulmonary disease, COPD)所引起的。因此,可以認為慢性肺源性心臟病是慢性阻塞性肺疾病的最常見并發(fā)癥。本節(jié)主要介紹與肺心病相關(guān)的肺循環(huán)高壓動物模型和慢性阻塞性肺疾病模型的復制。
肺循環(huán)高壓(pulmonary hypertension,PH)是指包括肺動脈高壓、肺靜脈高壓和混合性肺動脈高壓的總稱。整個肺循環(huán),任何系統(tǒng)或者局部病變而引起的肺循環(huán)血壓增高均可稱為肺循環(huán)高壓。肺動脈高壓(pulmonary arterial hypertension, PAH)是指肺動脈血壓增高而肺靜脈壓力正常,主要原因是肺小動脈原發(fā)病變,故需肺毛細血管鍥嵌壓(pulmonary capillary wedge pressure,PCWP)正常才能診斷,為肺循環(huán)高壓的第一大類,也稱之為動脈型肺動脈高壓。特發(fā)性肺動脈高壓(Idiopathic pulmonary arterial hypertension,IPAH)是沒有發(fā)現(xiàn)任何原因(包括遺傳、病毒、藥物)而發(fā)生的肺動脈高壓。肺循環(huán)血壓增高的診斷標準為在海平面狀態(tài)下,靜息時,右心導管術(shù)檢查肺動脈收縮壓大于30mmHg和(或)肺動脈平均壓大于25mmHg,或者運動時肺動脈平均壓>30mmHg。診斷肺動脈高壓,尚需包括PCWP<15mmHg。
部分造模方法
使用動物:大鼠
【造模機制】:
缺氧(hypoxia)是目前世界上通用且有效的建立肺循環(huán)高壓模型的方式。缺氧的程度、缺氧的不同時間及時間的長短對肺循環(huán)高壓均有不同影響。缺氧導致肺循環(huán)高壓的主要機制是肺小動脈中層的肥厚,管徑變小,肺血管平滑肌張力增大,肺血管收縮反應增強,肺血管阻力增加, 從而導致肺循環(huán)高壓。常用實驗動物包括大鼠、幼齡(乳)豬等。
【造模方法】:
直接向放動物的艙內(nèi)注入混合氣體,并監(jiān)測艙內(nèi)氣體濃度變化情況。實驗用雄性Wistar大鼠,體重150~250g左右,每次15~20只,置于密閉艙內(nèi)。先向艙內(nèi)注入氮氣,使艙內(nèi)氧濃度下降至10%左右,然后以2L/min的流速向艙內(nèi)注入低氧氣體(O2濃度10%,用N2平衡)。艙內(nèi)氣體用小風扇不斷混勻。艙的上部有一小孔接三通管,由此抽取艙內(nèi)氣體,用于監(jiān)測艙內(nèi)氧和二氧化碳濃度,使其分別控制在10%±10%和小于3%的范圍。艙內(nèi)的二氧化碳和水蒸氣分別用鈉石灰和氯化鈣吸收。密閉艙壁下部留有小縫隙與艙外相通,可供艙內(nèi)外氣體緩慢進出,使艙內(nèi)氣體與大氣壓始終保持平衡。
采用氮氣降低艙內(nèi)氧濃度 用氧分析儀和二氧化碳分析儀監(jiān)測并反饋調(diào)節(jié),使艙內(nèi)O2和CO2濃度保持在實驗條件要求的范圍內(nèi)。實驗用大鼠體重200~250g,每次8~10只,置于體積為220L的長方形有機玻璃艙內(nèi),缺氧時先開通氮氣瓶向艙內(nèi)注入氮氣,使艙內(nèi)氧濃度下降,艙內(nèi)氣體用小風扇不斷混勻。用一恒速泵將混勻的艙內(nèi)氣體輸入艙外的氧分析儀,持續(xù)監(jiān)測艙內(nèi)氧濃度。氧氣分析儀及電磁控制線路可反饋地控制氮氣瓶的電磁閥門,使艙內(nèi)氧濃度控制在調(diào)定點±0.5%范圍,艙內(nèi)的二氧化碳和水蒸氣分別用鈉石灰和氯化鈣吸收。密閉艙壁下部留有小縫隙與艙外相通,可供艙內(nèi)外氣體緩慢進出,使艙內(nèi)氣體與大氣壓始終保持平衡。每次缺氧開始時氧濃度從23%降至10%的時間約為30分鐘。缺氧期間艙內(nèi)CO2濃度始終小于3%。
【造模特點】:
大鼠缺氧5周后,引起低氧性肺血管收縮,使肺血管發(fā)生形態(tài)學的改變。
【模型評估和應用】:
由于該方法存在缺氧艙內(nèi)溫度不恒定及不能完全排除CO2和水蒸氣的影響等不足之處,后來對其常壓低氧的裝置進行改進后,可以準確、方便地復制低氧肺動脈高壓模型,穩(wěn)定性好,獨立性強,不受外界環(huán)境影響,整個缺氧過程做到完全自動化,省時省力,經(jīng)濟高效,能較好滿足常壓低氧條件需要,較常規(guī)方法更接近于常壓單純低氧所致的肺動脈高壓。同時,該裝置也可經(jīng)適當調(diào)整后,建立低氧、高CO2性肺循環(huán)高壓模型。
參考文獻:
1.方福德,周呂,丁濂,等. 現(xiàn)代醫(yī)學實驗技巧全書(下冊).北京:北京醫(yī)科大學中國協(xié)和醫(yī)科大學聯(lián)合出版社,1995
2.肖詩亮,高思海,楊辰垣.常壓缺氧性大鼠肺動脈高壓模型的改進.臨床心血管病雜志,2001,17 (4):190
3.荊志成.我國肺動脈高壓專家共識闡釋.中國實用內(nèi)科雜志,2007,27 (4):246-249
4.趙瑾,劉蓉,李洪濤,等.野百合堿誘導肺動脈高壓小型豬的病理改變.南方醫(yī)科大學學報,2012,32 (6):867-869
5.Allen K, Haworth SG. Impaired adaptation of pulmonary circulation to extrauterine life in newborn pigs exposed tohypox:ia:An ultrastructural study. J Pathol, 1986, 150(3): 205-212
6.Rahman I, Adcock lM. Oxidative stress and redox regulation of lung inilammal:ion in COPD. Eur Respi.r J, 2006, 28 (1):219-242
7.Sethi S,Mahler DA,Marcus P,el al. Inflammation in COPD:implications for management. Am J Med,2012, 125(12): 1162-1170
8.Tamimi A, Serrlarevic D, Hanania NA. The effects of cigarette smoke on airway inflammation in asthma and COPD:Therapeulic implications. Respir Med,2012,106 (3):319-328