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1、動(dòng)物組織采集
①?取材應(yīng)在冰上進(jìn)行，取材后組織用生理鹽水沖洗干凈，去除血漬和污物，并剔除非研究所需的組織特別是腸道組織，請(qǐng)一定注意清理干凈腸道內(nèi)容物；部分特別容易降解的樣本，如胰腺，有條件可以使用“蛋白穩(wěn)定保存液”“蛋白穩(wěn)定保存液”具體使用方法和用量，建議參考對(duì)應(yīng)廠家的試劑說(shuō)明書。
② 吸干水漬并切小塊，放入已標(biāo)記的凍存管中，液氮速凍后，轉(zhuǎn)運(yùn)至-80℃冰箱保存，運(yùn)輸時(shí)請(qǐng)使用大體積干冰運(yùn)輸。
干冰消耗量約為4-5kg/24h（根據(jù)溫度會(huì)有所變動(dòng)），請(qǐng)根據(jù)寄送時(shí)長(zhǎng)訂購(gòu)足量干冰，用厚實(shí)的泡沫箱進(jìn)行運(yùn)輸。
2、細(xì)胞樣本準(zhǔn)備
① 細(xì)胞培養(yǎng)或處理結(jié)束后，去除培養(yǎng)液；
② 用滅菌后的PBS緩沖液快速?zèng)_洗細(xì)胞，而后加入少量滅菌后的PBS，細(xì)胞刮將細(xì)胞刮下，移于1.5ml離心管中；
③ 快速離心去除上清，收集細(xì)胞，液氮速凍后放入干冰或于-80℃冰箱中保存。
3、血液樣本采集
全血提取白細(xì)胞進(jìn)行檢測(cè)：
將新鮮全血收集于肝素鈉（綠頭）或EDTA（紫頭）抗凝管中，上下輕輕顛倒幾次使血液與抗凝劑充分混勻，置于4°C或冰盒中正立放置，在離體1h之內(nèi)進(jìn)行白細(xì)胞提取（白細(xì)胞采集具體方法需參考各種分離液試劑說(shuō)明書）。
如果遠(yuǎn)距離運(yùn)輸不能保證時(shí)效性，請(qǐng)客戶自己提取好白細(xì)胞后，送白細(xì)胞沉淀送檢
4、菌類
液體培養(yǎng)基：
挑取單菌落于50ml液體培養(yǎng)基中，適宜溫度培養(yǎng)過(guò)夜，并在對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期進(jìn)行菌體采集。培養(yǎng)好的菌液適量轉(zhuǎn)入合適的離心管中，高速離心收集菌體，棄去上層培養(yǎng)基，用封口膜封口后液氮速凍，轉(zhuǎn)運(yùn)至-80℃冰箱保存，大體積干冰運(yùn)輸；
固體或半固體培養(yǎng)菌種收集：
涂布平板培養(yǎng)的微生物，在菌體生產(chǎn)最旺盛時(shí)期刮下，置于1.5或2.0ml的離心管中，迅速液氮速凍。-80℃冰箱保存，轉(zhuǎn)運(yùn)至-80℃冰箱保存，大體積干冰運(yùn)輸。
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樣本準(zhǔn)備注意事項(xiàng)：
① 為保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果，需盡量準(zhǔn)備新鮮或正確保存的樣品或蛋白提取液，陽(yáng)性對(duì)照樣品（細(xì)胞或組織）等。
② WB實(shí)驗(yàn)樣品參考樣本含量：
（1）細(xì)胞不少于1×10^7個(gè)；
（2）組織樣品不少于50mg；
（3）總蛋白濃度（細(xì)胞不低于3μg/μl，組織不低于5μg/μl）；
③ 樣本標(biāo)簽勿粘貼在EP管或錫箔紙上，低溫下標(biāo)簽紙易脫落，建議使用記號(hào)筆標(biāo)記；
④ 細(xì)胞樣本不建議采用粘稠保護(hù)劑保存，否則將無(wú)法離心收集存放在保護(hù)劑的細(xì)胞樣本。
如果組織是多平臺(tái)之間共用樣本，強(qiáng)烈建議客戶在送樣之前進(jìn)行分裝，分別送給對(duì)應(yīng)平臺(tái)，避免影響時(shí)效性，規(guī)避樣本反復(fù)凍融的風(fēng)險(xiǎn)
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